Background: Multiplex real-time RT-PCR assays for respiratory pathogens are valuable tools to optimize laboratory workflow and turnaround time. At a time when resurgence of influenza and respiratory syncytial virus (RSV) cases have been widely observed along with continued transmission of SARS-CoV-2, timely identification of all circulating respiratory viruses is crucial. This study evaluates the detection of low viral loads of SARS-CoV-2 by four multiplex molecular assays: Roche cobas 6800/8800 SARS-CoV-2 & Influenza A/B Test, Cepheid Xpert Xpress SARS-CoV-2/Flu/RSV, cobas Liat SARS-CoV-2 & Influenza A/B, and a laboratory-developed test (LDT).
Methods: Retrospective upper respiratory tract specimens positive for various respiratory viruses at a range of cycle threshold (Ct) values (18-40) were tested by four multiplex assays. Positive and negative percent agreement (PPA and NPA) with validated RT-PCR assays were calculated.
Results: A total of 82 samples were assessed, with discordant results observed in a portion of the samples (10/82, 12.2%) where Ct values were >33. The majority of the discordant results (6/10, 60%) were false negatives. Overall, PPA was 100% (58/58) for cobas 6800, 97.4% (38/39) for GeneXpert, 100% (17/17) for Liat, and 90.5% (57/63) for the LDT. PPA for the LDT increased to 92.1% after manual review of amplification curves.
Conclusions: Commercial multiplex respiratory virus assays have good performance for samples with medium to high viral loads (Ct values <33). Laboratories should consider appropriate test result review and confirmation protocols to optimize sensitivity, and may consider reporting samples with additional interpretive comments when low viral loads are detected.
Historique: Les dosages multiplex par RT-PCR en temps réel (amplification en chaîne par polymérase avec transcription inverse en temps réel) des agents pathogènes respiratoires sont des outils précieux pour optimiser le flux de travail et le temps de traitement en laboratoire. Alors qu’on observe une résurgence générale des cas d’influenza et du virus respiratoire syncytial (VRS) et une transmission continue du SRAS-CoV-2, il est crucial de détecter rapidement tous les virus respiratoires en circulation. Dans la présente étude, les chercheurs ont évalué la détection des faibles charges virales du SRAS-CoV-2 à l’aide de quatre dosages moléculaires multiplex : le test cobas 6800/8800 SRAS-CoV-2 et influenza A/B de Roche, le test Xpress SRAS-CoV-2/influenza/VRS de Cepheid Xpert, le test cobas SRAS-CoV-2 et influenza A/B de Liat et un test créé par le laboratoire (TCL).
Méthodologie: Les chercheurs ont procédé au dépistage rétrospectif d’échantillons ayant obtenu un résultat positif à divers virus respiratoires à une série de valeurs de cycle seuil (Ct) (18–40) à l’aide de quatre dosages multiplex. Ils ont calculé le pourcentage de concordance positif (PCP) et négatif (PCN) avec les dosages par RT-PCR validés.
Résultats: Au total, les chercheurs ont évalué 82 échantillons et observé des résultats discordants dans une partie des échantillons (dix sur 82, 12,2 %), pour lesquels les valeurs Ct étaient supérieures à 33. La majorité de ces résultats discordants (six sur dix, 60 %) étaient faussement négatifs. Dans l’ensemble, le PCP atteignait 100 % (58 sur 58) selon le test cobas 6800, 97,4 % (38 sur 39) selon le test GeneXpert, 100 % (17 sur 17) selon le test Liat et 90,5 % (57 sur 63) selon le TCL. Le PCP du TCL est passé à 92,1 % après l’examen manuel des courbes d’amplification.
Conclusions: Les dosages multiplex commerciaux des virus respiratoires donnent un bon rendement pour les échantillons contenant une charge virale modérée à élevée (valeurs Ct inférieures à 33). Les laboratoires devraient envisager de procéder à une analyse des résultats du dépistage et à des protocoles de confirmation appropriés pour en optimiser la sensibilité et pourraient également envisager d’ajouter des commentaires interprétatifs aux résultats des échantillons lorsque la charge virale décelée est faible.
Keywords: SARS-CoV-2; multiplex; panel; respiratory.
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