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Histona

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Representación esquemática del ensamblaje de las histonas nucleares en el nucleosoma.
Estructura del nucleosoma.

Las histonas son proteínas básicas, de baja masa molecular, y están muy conservadas (en términos evolutivos) entre los eucariontes. Forman la cromatina junto con el ADN sobre la base, entre otras; de unas unidades conocidas como nucleosomas. La cromatina reduce el tamaño lineal del ADN dentro del núcleo, compactándolo. La cromatina está formada por ADN y varios tipos de proteínas, las principales de las cuales son las histonas.

Historia

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En 1884, Albrecht Kossel reportó el aislamiento de un componente extraído por tratamiento ácido de núcleos de eritrocitos de ganso. Por su aparente similitud fisicoquímica con la peptona lo denominó histonas y sugirió que podría estar unido a los ácidos nucleicos.[1]​ La palabra histona deriva de la palabra alemana “Histon”, de origen incierto pero probablemente del griego “histanai” o de “histos”.

Hasta principios de 1990, las histonas fueron consideradas, por la mayoría, como material de relleno inerte del ADN nuclear eucariota, opinión basada, en parte, por los modelos de Mark Ptashne y otros, que creían que la transcripción era activada por la interacción proteína-ADN y proteína-proteína a lo largo de un molde de ADN, como en el caso de las bacterias.

Durante la década de 1980, Yahli Lorch y Roger Kornberg[2]​ demostraron que un nucleosoma en un núcleo promotor impide la iniciación de la transcripción in vitro, y Michael Grunstein[3]​ demostró que las histonas pueden reprimir la transcripción in vivo, lo que conduce a la idea del nucleosoma como un represor del gen.

Hasta la década de 1990 no se reconoció el papel regulador de las histonas, siendo vistas con anterioridad como mero sustrato para el plegamiento del ADN.

Vicente Allfrey y Alfred Mirsky, anteriormente, propusieron un papel de la modificación de las histonas en la activación transcripcional,[4]​ considerado como una manifestación molecular de la epigenética. Michael Grunstein[5]​ y David Allis[6]​ encontró apoyo en esta proposición gracias al conocimiento de la acetilación de histonas para la transcripción en la levadura y la actividad del activador transcripcional Gcn5 como una histona-acetiltransferasa.

El descubrimiento de la histona H5 parece remontarse a la década de 1970,[7]​ y en la actualidad se considera una isoforma de la histona H1.[8][9][10]

Clases y variantes

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Existen 5 familias de proteínas histonas: H1/H5, H2A, H2B, H3 y H4. Las histonas H2A, H2B, H3 y H4 se denominan histonas centrales o nucleosomales (o "core", en inglés), mientras que H1/H5 son histonas ligadoras (o "linker", en inglés).[11][12][13]

Las histonas se subdividen en histonas canónicas dependientes de replicación, cuyos genes se expresan durante la fase S del ciclo celular, e histonas variantes independientes de replicación, las cuales se expresan durante todo el ciclo celular. En mamíferos, los genes codificantes de histonas canónicas se agrupan en 4 loci altamente conservados evolutivamente, no tienen intrones y tienen una estructura central en el extremo 3', en lugar de una cadena poli-A. Los genes codificantes para histonas variantes no se agrupan en el ADN, tienen intrones y sus ARN mensajeros se regulan mediante colas poli-A.[14]​ Los organismos multicelulares complejos tienen normalmente un número mayor de histonas variantes, aportando variedad de diferentes funciones. Recientes estudios se centran en el rol de diferentes variantes en la regulación del desarrollo de un organismo.[15]​ En la base de datos "HistoneDB 2.0 - Variants" se puede consultar la clasificación y características específicas de diferentes variantes en múltiples organismos.[16][17]​ Se han descubierto también varios pseudogenes en secuencias del ADN muy cercanas de sus respectivos genes ortólogos.[18][19]

En la siguiente tabla se resumen las proteínas histonas humanas, genes y pseudogenes.[14]

Super familia Familia Genes dependientes de replicación Genes independientes de replicación Pseuodegenes
Ligadora ("Linker") H1 H1-1, H1-2, H1-3, H1-4, H1-5, H1-6 H1-0, H1-7, H1-8, H1-10 H1-9P, H1-12P
Central

("Core")

H2A H2AC1, H2AC4, H2AC6, H2AC7, H2AC8, H2AC11, H2AC12, H2AC13, H2AC14, H2AC15, H2AC16, H2AC17, H2AC18, H2AC19, H2AC20, H2AC21, H2AC25 H2AZ1, H2AZ2, MACROH2A1, MACROH2A2, H2AX, H2AJ, H2AB1, H2AB2, H2AB3, H2AP, H2AL1Q, H2AL3 H2AC2P, H2AC3P, H2AC5P, H2AC9P, H2AC10P, H2AQ1P, H2AL1MP
H2B H2BC1, H2BC3, H2BC4, H2BC5, H2BC6, H2BC7, H2BC8, H2BC9, H2BC10, H2BC11, H2BC12, H2BC13, H2BC14, H2BC15, H2BC17, H2BC18, H2BC21, H2BC26, H2BC12L H2BK1, H2BW1, H2BW2, H2BW3P, H2BN1 H2BC2P, H2BC16P, H2BC19P, H2BC20P, H2BC27P, H2BL1P, H2BW3P, H2BW4P
H3 H3C1, H3C2, H3C3, H3C4, H3C6, H3C7, H3C8, H3C10, H3C11, H3C12, H3C13, H3C14, H3C15, H3-4 H3-3A, H3-3B, H3-5, H3-7, H3Y1, H3Y2, CENPA H3C5P, H3C9P, H3P16, H3P44
H4 H4C1, H4C2, H4C3, H4C4, H4C5, H4C6, H4C7, H4C8, H4C9, H4C11, H4C12, H4C13, H4C14, H4C15 H4C16 H4C10P

Función

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Proteínas de soporte

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Las proteínas celulares más frecuentes son las proteínas histonas, siendo que cada célula eucariótica presenta varios cientos de millones de moléculas de histonas, mientras que las demás proteínas no alcanzan unos cientos (como mucho, a miles). Son proteínas de masa molecular baja, aproximadamente 11-12 Kd y exhiben un alto contenido, cerca de 20%, de lisina y arginina (aminoácidos básicos). Con las cargas positivas de las cadenas laterales de estos restos, las histonas (que son extremadamente básicas) se unen a los grupos fosfato del ADN (cargados negativamente); para ello no es relevante la secuencia de bases dentro del ADN. A menudo, las histonas son modificadas por metilaciones, acetilaciones, fosforilaciones o ADP-ribosilaciones.

  • Metilaciones: Determinan cambios permanentes en la cromatina. Están destinadas al mantenimiento de un tipo determinado de expresión génica. Enzimas encargadas: HMTasas.
  • Acetilaciones: en las colas de las histonas a nivel de lisina y arginina: modifican la cromatina determinando que pueda transcribir. Enzimas encargadas: HAT.
  • Desacetilaciones: determinan la compactación de la cromatina, silencia la actividad transcripcional. Enzimas encargadas: HDAC.

En los seres humanos hay cinco tipos principales: la histona H1 y las histonas H2A, H2B, H3 y H4. Estas últimas se denominan también histonas nucleosomales y forman un octámero con dos histonas de cada; alrededor de este núcleo se enrolla dos veces un hilo de ADN. Este complejo ADN-histona recibe el nombre de nucleosoma y constituye el componente primario del cromosoma.[20]

El ADN gira unos 147 pares de bases alrededor del núcleo de la histona y a continuación se desplaza unos 20-70 bp en un giro hacia la izquierda hasta alcanzar el siguiente nucleosoma. La pieza intermedia, también denominada ADN de conexión está “desnuda”, es decir, no está equipada con histonas. La histonas H1 se coloca como pieza de cierre en cada nucleosoma y al mismo tiempo toma contacto con las agrupaciones vecinas. De esto modo, las proteínas H1 van “grapando” los nucleosomas para formar un hilo denso: la fibra de cromatina.

Proteínas de control transcripcional

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Las características de las histonas han contribuido a que las histonas fueran visualizadas únicamente como proteínas que permitían al ADN enrollarse adquiriendo así un primer grado de compactación que le facilitaría ser almacenado en el núcleo. Sin embargo, pasó mucho tiempo hasta que se reparó en el hecho de que la naturaleza requería de un grupo de moléculas que participaran en la compactación del ADN: cualquier secuencia de aminoácidos con carga positiva podría llevar a cabo dicha función. Esto es, no había necesidad de conservar una secuencia precisa de aminoácidos a lo largo de millones de años.[21]

Hasta la segunda mitad de la década de 1980 estas observaciones no fueron reconsideradas más cuidadosamente, cuando los grupos de Roger Kornberg y Donald Brown observaron que cuando la secuencia de ADN conocida como caja TATA (la cual se localiza en la secuencia regulatoria denominada promotor) quedaba íntimamente asociada a las histonas en el nucleosoma, la transcripción resultaba reprimida. Por el contrario, cuando dicha secuencia se colocaba fuera del nucleosoma, la transcripción podía producirse libremente.[22]

Actualmente, se sabe que todo el ADN nuclear está enrollado en nucleosomas que se organizan en fibras de cromatina y que los reguladores de genes no pueden unirse a un ADN tan compacto, ya que sus lugares de unión están copados (tapados) por nucleosomas. Así, los factores de transcripción primero deben hacer la tarea de distender los nucleosomas para obtener un acceso físico.

Un conjunto de factores de transcripción puede modificar covalentemente los restos de histonas situados en el núcleo de los nucleosomas. Algunos tienen actividad histona-acetiltransferasa, con la que acetilan el grupo ε-amino de los restos de lisina. Así, estos pierden su carga positiva y ya no pueden mantener los enlaces iónicos, lo que hace que el núcleo de los nucleosomas se distienda.

De este modo, las secuencias reguladoras del ADN quedan accesibles. Las histonas también pueden modificarse por metilación, ribosilación o fosforilación; aún no se conoce en detalles cuáles son los mecanismos precisos con los que estas modificaciones influyen en la regulación genética.

Proteínas de estabilización genómica

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Además de su papel en el empaquetamiento del ADN, las histonas también juegan un papel clave en la respuesta al daño del ADN. A continuación se relatarán algunos ejemplos de como las modificaciones histónicas pueden proporcionar un ambiente favorable en la estabilidad del genoma.

  • La acetilación de la histona H3 K56 es un factor clave para proporcionar un entorno de cromatina favorable para la reparación del ADN.[23]
  • La desacetilación y la metilación de H3-K9 son necesarias para una condensación cromosómica adecuada, un factor integral en el mantenimiento de la estabilidad genómica.[24]
  • La acetilación de H4-K16 es un factor importante en el reclutamiento de la proteína 1 del punto de control del daño del ADN, llamada MDC1, la cual juega un papel importante en la reparación del ADN.[25]
  • La fosforilación de H2AX es otro componente crítico de la respuesta al daño del ADN. Dicha fosforilación promueve que media la interacción con MDC1, que a su vez se une a la proteína NBS1, encargada de la reparación de ADN y del mantenimiento de telómeros nbs1.[26]

Véase también

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Referencias

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  1. Wu, R. S.; Panusz, H. T.; Hatch, C. L.; Bonner, W. M. (1986). «Histones and their modifications». CRC critical reviews in biochemistry 20 (2): 201-263. ISSN 0045-6411. PMID 3519076. doi:10.3109/10409238609083735. Consultado el 23 de septiembre de 2022. 
  2. Lorch Y; LaPointe JW; Kornberg RD (Abril de 1987). «Nucleosomes inhibit the initiation of transcription but allow chain elongation with the displacement of histones». Cell 49 (2): 203-10. PMID 3568125. doi:10.1016/0092-8674(87)90561-7. Consultado el 23 de septiembre de 2022. 
  3. Kayne PS; Kim UJ; Han M; Mullen JR; Yoshizaki F; Grunstein M (Oct 1988). «Extremely conserved histone H4 N terminus is dispensable for growth but essential for repressing the silent mating loci in yeast». Cell 55 (1): 27-39. PMID 3048701. doi:10.1016/0092-8674(88)90006-2. Consultado el 23 de septiembre de 2022. 
  4. Allfrey, Vincent (1966). «RNA synthesis and histone acetylation during the course of gene activation in lymphocytes». Proc Natl Acad Sci U S A. PMC 224233. PMID 5219687. doi:10.1073/pnas.55.4.805. Consultado el 23 de septiembre de 2022. 
  5. Grunstein, Michael (1991). «Yeast histone H4 N-terminal sequence is required for promoter activation in vivo». Cell. PMID 2044150. doi:10.1016/0092-8674(91)90554-c. Consultado el 23 de septiembre de 2022. 
  6. Allis, C David (1996). «Tetrahymena histone acetyltransferase A: a homolog to yeast Gcn5p linking histone acetylation to gene activation». Cell. doi:10.1016/S0092-8674(00)81063-6. Consultado el 23 de septiembre de 2022. 
  7. Aviles FJ; Chapman GE; Kneale GG; Crane-Robinson C; Bradbury EM (Agosto de 1978). «The conformation of histone H5. Isolation and characterisation of the globular segment». European Journal of Biochemistry / FEBS 88 (2): 363-71. PMID 689022. doi:10.1111/j.1432-1033.1978.tb12457.x. 
  8. Cox, Michael; Nelson, David R.; Lehninger, Albert L (2005). Lehninger Principles of Biochemistry. San Francisco: W.H. Freeman. ISBN 0-7167-4339-6. 
  9. Bhasin, Manoj; Reinherz, Ellis L.; Reche, Pedro A. (10 de febrero de 2006). «Recognition and classification of histones using support vector machine». Journal of Computational Biology 13 (1): 102-12. PMID 16472024. doi:10.1089/cmb.2006.13.102. Consultado el 23 de septiembre de 2022. 
  10. Hartl, Daniel L.; Freifelder, David; Snyder, Leon A. (1988). Basic Genetics. Boston: Jones and Bartlett Publishers. ISBN 0-86720-090-1. Consultado el 23 de septiembre de 2022. 
  11. «Histone Variants Database 2.0». Centro Nacional para la Información Biotecnológica. Consultado el 9 de diciembre de 2023. 
  12. Cox, M.; Nelson, D. R.; Lehninger, A. L. (2005). Lehninger principles of biochemistry. San Francisco: W.H. Freeman. ISBN 978-0-7167-4339-2. Consultado el 9 de diciembre de 2023. 
  13. Hartl, D. L.; Freifelder, D.; Snyder, L. A. (1988). Basic genetics. Boston: Boston : Jones and Bartlett Publishers. ISBN 978-0-86720-090-4. Consultado el 9 de diciembre de 2023. 
  14. a b Seal, Ruth L.; Denny, Paul; Bruford, Elspeth A.; Gribkova, Anna K.; Landsman, David; Marzluff, William F.; McAndrews, Monica; Panchenko, Anna R. et al. (1 de octubre de 2022). «A standardized nomenclature for mammalian histone genes». Epigenetics & Chromatin 15 (1): 34. ISSN 1756-8935. PMC 9526256. PMID 36180920. doi:10.1186/s13072-022-00467-2. Consultado el 9 de diciembre de 2023. 
  15. Jang, Chuan-Wei; Shibata, Yoichiro; Starmer, Joshua; Yee, Della; Magnuson, Terry (1 de julio de 2015). «Histone H3.3 maintains genome integrity during mammalian development». Genes & Development 29 (13): 1377-1392. ISSN 1549-5477. PMC 4511213. PMID 26159997. doi:10.1101/gad.264150.115. Consultado el 9 de diciembre de 2023. 
  16. Draizen, Eli J.; Shaytan, Alexey K.; Mariño-Ramírez, Leonardo; Talbert, Paul B.; Landsman, David; Panchenko, Anna R. (2016). «HistoneDB 2.0: a histone database with variants--an integrated resource to explore histones and their variants». Database: The Journal of Biological Databases and Curation 2016: baw014. ISSN 1758-0463. PMC 4795928. PMID 26989147. doi:10.1093/database/baw014. Consultado el 9 de diciembre de 2023. 
  17. El Kennani, Sara; Adrait, Annie; Shaytan, Alexey K.; Khochbin, Saadi; Bruley, Christophe; Panchenko, Anna R.; Landsman, David; Pflieger, Delphine et al. (2017). «MS_HistoneDB, a manually curated resource for proteomic analysis of human and mouse histones». Epigenetics & Chromatin 10: 2. ISSN 1756-8935. PMC 5223428. PMID 28096900. doi:10.1186/s13072-016-0109-x. Consultado el 9 de diciembre de 2023. 
  18. Marashi, F.; Prokopp, K.; Stein, J.; Stein, G. (Abril de 1984). «Evidence for a human histone gene cluster containing H2B and H2A pseudogenes». Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America 81 (7): 1936-1940. ISSN 0027-8424. PMID 6326092. doi:10.1073/pnas.81.7.1936. Consultado el 9 de diciembre de 2023. 
  19. Kardalinou, E.; Eick, S.; Albig, W.; Doenecke, D. (Agosto de 1993). «Association of a human H1 histone gene with an H2A pseudogene and genes encoding H2B.1 and H3.1 histones». Journal of Cellular Biochemistry 52 (4): 375-383. ISSN 0730-2312. PMID 8227173. doi:10.1002/jcb.240520402. Consultado el 9 de diciembre de 2023. 
  20. Müller-Esterl, Werner (2004). Bioquímica – Fundamentos para Medicina y Ciencias de la Vida. Reverté. p. 213. ISBN 978-84-291-7393-2. Consultado el 23 de septiembre de 2022. 
  21. Raquel Ortega, Carlos Luna, José Luis Busto y Fernando Montiel. «Dualidad funcional de las histonas: proteínas de empacamiento genómico y de control transcripcional». Archivado desde el original el 20 de marzo de 2009. 
  22. Felsenfeld, Gary (19 de enero de 1992). «Chromatin as an essential part of the transcriptional mechanim» [Cromatina, un importante papel del mecanismo de transcripción]. Nature (en inglés) 355: 219 - 224. doi:10.1038/355219a0. Consultado el 23 de septiembre de 2022. (requiere suscripción). 
  23. Masumoto, Hiroshi; Hawke, David; Kobayashi, Ryuji; Verreault, Alain (Julio de 2005). «A role for cell-cycle-regulated histone H3 lysine 56 acetylation in the DNA damage response». Nature (en inglés) 436 (7048): 294-298. ISSN 1476-4687. doi:10.1038/nature03714. Consultado el 8 de enero de 2020. 
  24. Park, Jin-Ah; Kim, Ae-Jin; Kang, Yoonsung; Jung, Yu-Jin; Kim, Hyong Kyu; Kim, Keun-Cheol (1 de abril de 2011). «Deacetylation and methylation at histone H3 lysine 9 (H3K9) coordinate chromosome condensation during cell cycle progression». Molecules and Cells (en inglés) 31 (4): 343-349. ISSN 0219-1032. PMC 3933963. PMID 21359677. doi:10.1007/s10059-011-0044-4. Consultado el 8 de enero de 2020. 
  25. Li, X.; Corsa, C. A. S.; Pan, P. W.; Wu, L.; Ferguson, D.; Yu, X.; Min, J.; Dou, Y. (15 de noviembre de 2010). «MOF and H4 K16 Acetylation Play Important Roles in DNA Damage Repair by Modulating Recruitment of DNA Damage Repair Protein Mdc1». Molecular and Cellular Biology (en inglés) 30 (22): 5335-5347. ISSN 0270-7306. PMC 2976376. PMID 20837706. doi:10.1128/MCB.00350-10. Consultado el 8 de enero de 2020. 
  26. Stucki, Manuel; Clapperton, Julie A.; Mohammad, Duaa; Yaffe, Michael B.; Smerdon, Stephen J.; Jackson, Stephen P. (29 de diciembre de 2005). «MDC1 Directly Binds Phosphorylated Histone H2AX to Regulate Cellular Responses to DNA Double-Strand Breaks». Cell (en inglés) 123 (7): 1213-1226. ISSN 0092-8674. PMID 16377563. doi:10.1016/j.cell.2005.09.038. Consultado el 8 de enero de 2020. 

Bibliografía

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  • Müller-Esterl, Werner (2004). Bioquímica – Fundamentos para Medicina y Ciencias de la Vida. Reverté. p. 279.