Luteolina: differenze tra le versioni

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{{S|chimica degli alimenti}}
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La '''luteolina''' fa parte dei [[Polifenolo|composti polifenolici]] ed è un [[flavone]]. Si trova in moltissime piante ed è da tempo nota la sua capacità [[antiossidante]]. <ref name=":0">{{Cita pubblicazione|nome=Miguel|cognome=Lopez-Lazaro|data=2009-01-01|titolo=Distribution and Biological Activities of the Flavonoid Luteolin|rivista=Mini-Reviews in Medicinal Chemistry|volume=9|numero=1|pp=31–59|accesso=2022-02-18|doi=10.2174/138955709787001712|url=http://dx.doi.org/10.2174/138955709787001712}}</ref>
La '''luteolina''' fa parte dei [[Polifenolo|composti polifenolici]] ed è un [[flavone]]. Si trova in moltissime piante ed è da tempo nota la sua capacità [[antiossidante]].<ref name=":0">{{Cita pubblicazione|nome=Miguel|cognome=Lopez-Lazaro|data=2009-01-01|titolo=Distribution and Biological Activities of the Flavonoid Luteolin|rivista=Mini-Reviews in Medicinal Chemistry|volume=9|numero=1|pp=31–59|accesso=2022-02-18|doi=10.2174/138955709787001712|url=http://dx.doi.org/10.2174/138955709787001712}}</ref>


È un composto cristallino di color bianco sporco, quasi giallo. Il suo nome, infatti, deriva dall'aggettivo latino "luteus", che significa di "color giallo biondo".
È un composto cristallino di color bianco sporco, quasi giallo. Il suo nome, infatti, deriva dall'aggettivo latino "luteus", che significa di "color giallo biondo".


== Chimica ==
== Chimica ==
Appartiene alla classe dei flavoni, come tale è il flavone tetraidrossilato nelle posizioni 4', 5', 5 e 7 <ref>{{Cita pubblicazione|nome=Muhammad|cognome=Imran|nome2=Abdur|cognome2=Rauf|nome3=Tareq|cognome3=Abu-Izneid|data=2019-04-01|titolo=Luteolin, a flavonoid, as an anticancer agent: A review|rivista=Biomedicine & Pharmacotherapy|volume=112|pp=108612|lingua=en|accesso=2022-02-18|doi=10.1016/j.biopha.2019.108612|url=https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S0753332218367180}}</ref>. La struttura dei flavonoidi è fondamentale per la loro attività antiossidante, soprattutto per adiuvare la delocalizzazione e l'acquisizione degli elettroni <ref name=":1">{{Cita pubblicazione|nome=Kelly L.|cognome=Wolfe|nome2=Rui Hai|cognome2=Liu|data=2008-09-24|titolo=Structure−Activity Relationships of Flavonoids in the Cellular Antioxidant Activity Assay|rivista=Journal of Agricultural and Food Chemistry|volume=56|numero=18|pp=8404–8411|accesso=2022-02-18|doi=10.1021/jf8013074|url=https://doi.org/10.1021/jf8013074}}</ref>.
Appartiene alla classe dei flavoni, come tale è il flavone tetraidrossilato nelle posizioni 4', 5', 5 e 7<ref>{{Cita pubblicazione|nome=Muhammad|cognome=Imran|nome2=Abdur|cognome2=Rauf|nome3=Tareq|cognome3=Abu-Izneid|data=2019-04-01|titolo=Luteolin, a flavonoid, as an anticancer agent: A review|rivista=Biomedicine & Pharmacotherapy|volume=112|pp=108612|lingua=en|accesso=2022-02-18|doi=10.1016/j.biopha.2019.108612|url=https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S0753332218367180}}</ref>. La struttura dei flavonoidi è fondamentale per la loro attività antiossidante, soprattutto per adiuvare la delocalizzazione e l'acquisizione degli elettroni<ref name=":1">{{Cita pubblicazione|nome=Kelly L.|cognome=Wolfe|nome2=Rui Hai|cognome2=Liu|data=2008-09-24|titolo=Structure−Activity Relationships of Flavonoids in the Cellular Antioxidant Activity Assay|rivista=Journal of Agricultural and Food Chemistry|volume=56|numero=18|pp=8404–8411|accesso=2022-02-18|doi=10.1021/jf8013074|url=https://doi.org/10.1021/jf8013074}}</ref>.


Un altro fondamentale parametro da considerare per la capacità antiossidante della luteolina è la [[Idrofobia|lipofilia]] della molecola, misurata tramite il [[Coefficiente di ripartizione (chimica)|coefficiente di ripartizione olio-acqua]]. Essa, nelle piante, è legata a molecole zuccherine tramite i gruppi idrossilici <ref name=":1" />, ma in assorbimento intestinale vengono liberati i legami, e questo permette l'assorbimento della molecola all'interno delle [[Membrana cellulare|membrane cellulari]] <ref name=":2">{{Cita pubblicazione|nome=Muhammad Faisal|cognome=Manzoor|nome2=Nazir|cognome2=Ahmad|nome3=Zahoor|cognome3=Ahmed|data=2019|titolo=Novel extraction techniques and pharmaceutical activities of luteolin and its derivatives|rivista=Journal of Food Biochemistry|volume=43|numero=9|pp=e12974|lingua=en|accesso=2022-02-18|doi=10.1111/jfbc.12974|url=https://onlinelibrary.wiley.com/doi/abs/10.1111/jfbc.12974}}</ref>.
Un altro fondamentale parametro da considerare per la capacità antiossidante della luteolina è la [[Idrofobia|lipofilia]] della molecola, misurata tramite il [[Coefficiente di ripartizione (chimica)|coefficiente di ripartizione olio-acqua]]. Essa, nelle piante, è legata a molecole zuccherine tramite i gruppi idrossilici<ref name=":1" />, ma in assorbimento intestinale vengono liberati i legami, e questo permette l'assorbimento della molecola all'interno delle [[Membrana cellulare|membrane cellulari]]<ref name=":2">{{Cita pubblicazione|nome=Muhammad Faisal|cognome=Manzoor|nome2=Nazir|cognome2=Ahmad|nome3=Zahoor|cognome3=Ahmed|data=2019|titolo=Novel extraction techniques and pharmaceutical activities of luteolin and its derivatives|rivista=Journal of Food Biochemistry|volume=43|numero=9|pp=e12974|lingua=en|accesso=2022-02-18|doi=10.1111/jfbc.12974|url=https://onlinelibrary.wiley.com/doi/abs/10.1111/jfbc.12974}}</ref>.


== Biosintesi ==
== Biosintesi ==
La biosintesi della luteolina deriva dall'unione del 4-cumaroil-CoA e il 3-malonil-CoA tramite l'enzima calcone sintasi. Il 4-cumaroil-CoA deriva dalla via dell'[[acido shikimico]]. Il 3-malonil-CoA deriva dall'[[Acetil-coenzima A|Acetil-CoA]]. A quel punto intervengono le [[idrossilasi]] che si occupano della reazione di [[idrossilazione]] nelle posizioni indicate per la luteolina <ref>{{Cita pubblicazione|nome=Maike|cognome=Petersen|data=2013-03-01|titolo=Rosmarinic acid: new aspects|rivista=Phytochemistry Reviews|volume=12|numero=1|pp=207–227|lingua=en|accesso=2022-02-18|doi=10.1007/s11101-013-9282-8|url=https://doi.org/10.1007/s11101-013-9282-8}}</ref>.
La biosintesi della luteolina deriva dall'unione del 4-cumaroil-CoA e il 3-malonil-CoA tramite l'enzima calcone sintasi. Il 4-cumaroil-CoA deriva dalla via dell'[[acido shikimico]]. Il 3-malonil-CoA deriva dall'[[Acetil-coenzima A|Acetil-CoA]]. A quel punto intervengono le [[idrossilasi]] che si occupano della reazione di [[idrossilazione]] nelle posizioni indicate per la luteolina<ref>{{Cita pubblicazione|nome=Maike|cognome=Petersen|data=2013-03-01|titolo=Rosmarinic acid: new aspects|rivista=Phytochemistry Reviews|volume=12|numero=1|pp=207–227|lingua=en|accesso=2022-02-18|doi=10.1007/s11101-013-9282-8|url=https://doi.org/10.1007/s11101-013-9282-8}}</ref>.


== Derivati ==
== Derivati ==
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* [[Isoorientina 3'-O-metiltransferasi|Isorientina]]
* [[Isoorientina 3'-O-metiltransferasi|Isorientina]]


Troviamo anche poi i glicosidi e gli zuccheri maggiormente legati sonoː [[D(+)-xilosio|xilosio]], [[ramnosio]], [[rutinosio]], [[arabinosio]], [[acido glucuronico]]. <ref name=":0" />
Troviamo anche poi i glicosidi e gli zuccheri maggiormente legati sonoː [[D(+)-xilosio|xilosio]], [[ramnosio]], [[rutinosio]], [[arabinosio]], [[acido glucuronico]].<ref name=":0" />


== Distribuzione nelle piante ==
== Distribuzione nelle piante ==
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{{div col end}}
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La luteolina è stata identificata in molte piante alimentari come [[Daucus carota|carote]], [[Peperone|peperoni]], [[Apium graveolens|sedano]], [[Olea europaea|olio d'oliva]], [[Mentha piperita|menta piperita]], [[Thymus|timo]], [[Rosmarinus officinalis|rosmarino]], [[Origanum|origano]], [[Lactuca sativa|lattuga]], foglie di [[Perilla frutescens|Perilla]], [[Punica granatum|melograno]], [[Theobroma cacao|cioccolato]], [[Aspalathus linearis|rooibos tè]], germogli di [[Fagopyrum esculentum|grano saraceno]], [[Brassica napus|rapa]], [[Capparis spinosa|capperi]] e [[Cucumis sativus|cetrioli]]. È stata anche identificata nel [[Citrus limon|limone]], [[Beta vulgaris|barbabietola]], [[Cavolo di Bruxelles|cavoletti di Bruxelles]], [[Brassica oleracea|cavolo]], [[cavolfiore]], [[Allium schoenoprasum|erba cipollina]], [[Foeniculum vulgare|finocchio]], [[Petroselinum crispum|prezzemolo]], [[Spinacia oleracea|spinaci]] e [[tè verde]]. <ref name=":0" />
La luteolina è stata identificata in molte piante alimentari come [[Daucus carota|carote]], [[Peperone|peperoni]], [[Apium graveolens|sedano]], [[Olea europaea|olio d'oliva]], [[Mentha piperita|menta piperita]], [[Thymus|timo]], [[Rosmarinus officinalis|rosmarino]], [[Origanum|origano]], [[Lactuca sativa|lattuga]], foglie di [[Perilla frutescens|Perilla]], [[Punica granatum|melograno]], [[Theobroma cacao|cioccolato]], [[Aspalathus linearis|rooibos tè]], germogli di [[Fagopyrum esculentum|grano saraceno]], [[Brassica napus|rapa]], [[Capparis spinosa|capperi]] e [[Cucumis sativus|cetrioli]]. È stata anche identificata nel [[Citrus limon|limone]], [[Beta vulgaris|barbabietola]], [[Cavolo di Bruxelles|cavoletti di Bruxelles]], [[Brassica oleracea|cavolo]], [[cavolfiore]], [[Allium schoenoprasum|erba cipollina]], [[Foeniculum vulgare|finocchio]], [[Petroselinum crispum|prezzemolo]], [[Spinacia oleracea|spinaci]] e [[tè verde]].<ref name=":0" />


== Attività biologiche ==
== Attività biologiche ==
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=== Attività antiossidante ===
=== Attività antiossidante ===
È stata studiata la capacità di eliminare le specie reattive dell’ossigeno ([[Specie reattive all'ossigeno|ROS]]) e dell’azoto ([[Specie reattive dell'azoto|RNS]]) ma anche di chelare i metalli di transizione che possono indurre danni ossidativi, così come inibire gli enzimi pro-ossidanti e indurre gli enzimi antiossidanti <ref name=":0" />.
È stata studiata la capacità di eliminare le specie reattive dell’ossigeno ([[Specie reattive all'ossigeno|ROS]]) e dell’azoto ([[Specie reattive dell'azoto|RNS]]) ma anche di chelare i metalli di transizione che possono indurre danni ossidativi, così come inibire gli enzimi pro-ossidanti e indurre gli enzimi antiossidanti<ref name=":0" />.


Uno studio condotto sulle cellule CH27 di [[Carcinoma del polmone|carcinoma polmonare]] squamoso umano mostra che l'effetto farmacologico di questo flavonoide è associato all'attivazione della [[superossido dismutasi]] e della [[catalasi]] anziché alla produzione di specie reattive dell'ossigeno e alla distruzione del potenziale della [[membrana mitocondriale]] <ref>{{Cita pubblicazione|nome=Henry|cognome=Wing-Cheung Leung|nome2=Chao-Lin|cognome2=Kuo|nome3=Wen-Hui|cognome3=Yang|data=2006-03-18|titolo=Antioxidant enzymes activity involvement in luteolin-induced human lung squamous carcinoma CH27 cell apoptosis|rivista=European Journal of Pharmacology|volume=534|numero=1|pp=12–18|lingua=en|accesso=2022-02-18|doi=10.1016/j.ejphar.2006.01.021|url=https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S0014299906000070}}</ref>.
Uno studio condotto sulle cellule CH27 di [[Carcinoma del polmone|carcinoma polmonare]] squamoso umano mostra che l'effetto farmacologico di questo flavonoide è associato all'attivazione della [[superossido dismutasi]] e della [[catalasi]] anziché alla produzione di specie reattive dell'ossigeno e alla distruzione del potenziale della [[membrana mitocondriale]]<ref>{{Cita pubblicazione|nome=Henry|cognome=Wing-Cheung Leung|nome2=Chao-Lin|cognome2=Kuo|nome3=Wen-Hui|cognome3=Yang|data=2006-03-18|titolo=Antioxidant enzymes activity involvement in luteolin-induced human lung squamous carcinoma CH27 cell apoptosis|rivista=European Journal of Pharmacology|volume=534|numero=1|pp=12–18|lingua=en|accesso=2022-02-18|doi=10.1016/j.ejphar.2006.01.021|url=https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S0014299906000070}}</ref>.


Un altro meccanismo antiossidante messo in atto dalla luteolina sarebbe legato alla modulazione dei [[Lipopolisaccaride|lipopolisaccaridi]] <ref name=":2" />.
Un altro meccanismo antiossidante messo in atto dalla luteolina sarebbe legato alla modulazione dei [[Lipopolisaccaride|lipopolisaccaridi]]<ref name=":2" />.


A concentrazioni micromolari può inibire il [[NF-κB|fattore NF-κB]], la cui attivazione porta all’aumento del rilascio di [[Citochina|citochine]] pro-infiammatorie, [[chemochine]] ed enzimi (quali [[Ossido nitrico sintasi|iNOS]], [[COX-2]], [[TNF]], [[Interleuchina 6|IL-6]], [[Interleuchina 8|IL-8]], [[Interleuchina 1|IL-1]]). È stato anche identificato come la luteolina inibisce il rilascio di [[Fattore di necrosi tumorale|TNF-α]] nei [[Macrofago|macrofagi]]. Inoltre la molecola è anche in grado di bloccare l’attivazione di NF-κB indotta dal lipopolisaccaride (LPS). La luteolina inoltre inibisce l’attivazione della proteina AP-1, che media l’espressione della citochina IL-6. L’attività inibitoria della luteolina è indirizzata anche verso gli enzimi pro-infiammatori, come le cicloossigenasi, atte a sintetizzare [[prostaglandine]] e [[leucotrieni]], noti mediatori dell’infiammazione <ref name=":0" /><ref name=":2" />.
A concentrazioni micromolari può inibire il [[NF-κB|fattore NF-κB]], la cui attivazione porta all’aumento del rilascio di [[Citochina|citochine]] pro-infiammatorie, [[chemochine]] ed enzimi (quali [[Ossido nitrico sintasi|iNOS]], [[COX-2]], [[Tumor necrosis factor|TNF]], [[Interleuchina 6|IL-6]], [[Interleuchina 8|IL-8]], [[Interleuchina 1|IL-1]]). È stato anche identificato come la luteolina inibisce il rilascio di [[Fattore di necrosi tumorale|TNF-α]] nei [[Macrofago|macrofagi]]. Inoltre la molecola è anche in grado di bloccare l’attivazione di NF-κB indotta dal lipopolisaccaride (LPS). La luteolina inoltre inibisce l’attivazione della proteina AP-1, che media l’espressione della citochina IL-6. L’attività inibitoria della luteolina è indirizzata anche verso gli enzimi pro-infiammatori, come le cicloossigenasi, atte a sintetizzare [[prostaglandine]] e [[leucotrieni]], noti mediatori dell’infiammazione<ref name=":0" /><ref name=":2" />.


=== Attività anti-diabetica ===
=== Attività anti-diabetica ===
Sembrerebbe avere un effetto protettivo sulla cardiomiopatia diabetica, la nefropatia diabetica e lo stress ossidativo nella condizione diabetica, ciò tramite l’azione di scavenging dei ROS e l’aumento dell’espressione della [[Superossido dismutasi|SOD]], attività quindi legata alla sua capacità antiossidante <ref name=":5" />.
Sembrerebbe avere un effetto protettivo sulla cardiomiopatia diabetica, la nefropatia diabetica e lo stress ossidativo nella condizione diabetica, ciò tramite l’azione di scavenging dei ROS e l’aumento dell’espressione della [[Superossido dismutasi|SOD]], attività quindi legata alla sua capacità antiossidante<ref name=":5" />.


==== Inibizione α-glucosidasiː reversibile e non competitiva ====
==== Inibizione α-glucosidasiː reversibile e non competitiva ====
Uno studio interessante mette in relazione la luteolina con l'[[acarbosio]] (uno dei composti utilizzati nella terapia antidiabetica al giorno d'oggi) per quanto riguarda l'attività inibitoria sull'[[Alfa glicosidasi|α-glucosidasi]]. La luteolina presenta una marcata inibizione dell'enzima resposabile del picco glicemico, in modo dipendente dalla concentrazione con valore di [[IC50]] 32,3 µM, quindi 25 volte inferiori a quelle dell'acarbosio <ref name=":6">{{Cita pubblicazione|nome=Francine Medjiofack|cognome=Djeujo|nome2=Eugenio|cognome2=Ragazzi|nome3=Miriana|cognome3=Urettini|data=2022-02-08|titolo=Magnolol and Luteolin Inhibition of α-Glucosidase Activity: Kinetics and Type of Interaction Detected by In Vitro and In Silico Studies|rivista=Pharmaceuticals|volume=15|numero=2|pp=205|accesso=2022-03-01|doi=10.3390/ph15020205|url=http://dx.doi.org/10.3390/ph15020205}}</ref>. Anche altri studi evidenziano la potenza inibitoria della luteolina, che, in relazione all'acarbosio, risulta 13 <ref>{{Cita pubblicazione|nome=Huilin|cognome=Li|nome2=Fengrui|cognome2=Song|nome3=Junpeng|cognome3=Xing|data=2009-08-01|titolo=Screening and structural characterization of α-glucosidase inhibitors from hawthorn leaf flavonoids extract by ultrafiltration LC-DAD-MSn and SORI-CID FTICR MS|rivista=Journal of the American Society for Mass Spectrometry|volume=20|numero=8|pp=1496–1503|accesso=2022-03-01|doi=10.1016/j.jasms.2009.04.003|url=https://doi.org/10.1016/j.jasms.2009.04.003}}</ref> e 17 <ref>{{Cita pubblicazione|nome=Carina|cognome=Proença|nome2=Marisa|cognome2=Freitas|nome3=Daniela|cognome3=Ribeiro|data=2017-01-01|titolo=α-Glucosidase inhibition by flavonoids: an in vitro and in silico structure–activity relationship study|rivista=Journal of Enzyme Inhibition and Medicinal Chemistry|volume=32|numero=1|pp=1216–1228|accesso=2022-03-01|doi=10.1080/14756366.2017.1368503|url=https://doi.org/10.1080/14756366.2017.1368503}}</ref> volte maggiore. Lo studio in questione descrive il legame con l'enzima come [[Inibizione enzimatica|reversibile]] e suggerisce un'affinità nel legare l'enzima libero o il complesso enzima-substrato ([[Inibitore non competitivo|inibizione non competitiva]]) <ref name=":6" />.
Uno studio interessante del 2022 mette in relazione la luteolina con l'[[acarbosio]] (uno dei composti utilizzati nella terapia antidiabetica al giorno d'oggi) per quanto riguarda l'attività inibitoria sull'[[Alfa glicosidasi|α-glucosidasi]]. La luteolina presenta una marcata inibizione dell'enzima responsabile del picco glicemico, in modo dipendente dalla concentrazione con valore di [[IC50]] 32,3 µM, quindi 25 volte inferiori a quelle dell'acarbosio<ref name=":6">{{Cita pubblicazione|nome=Francine Medjiofack|cognome=Djeujo|nome2=Eugenio|cognome2=Ragazzi|nome3=Miriana|cognome3=Urettini|data=2022-02-08|titolo=Magnolol and Luteolin Inhibition of α-Glucosidase Activity: Kinetics and Type of Interaction Detected by In Vitro and In Silico Studies|rivista=Pharmaceuticals|volume=15|numero=2|pp=205|accesso=2022-03-01|doi=10.3390/ph15020205|url=http://dx.doi.org/10.3390/ph15020205}}</ref>. Anche altri studi evidenziano la potenza inibitoria della luteolina, che, in relazione all'acarbosio, risulta 13<ref>{{Cita pubblicazione|nome=Huilin|cognome=Li|nome2=Fengrui|cognome2=Song|nome3=Junpeng|cognome3=Xing|data=2009-08-01|titolo=Screening and structural characterization of α-glucosidase inhibitors from hawthorn leaf flavonoids extract by ultrafiltration LC-DAD-MSn and SORI-CID FTICR MS|rivista=Journal of the American Society for Mass Spectrometry|volume=20|numero=8|pp=1496–1503|accesso=2022-03-01|doi=10.1016/j.jasms.2009.04.003|url=https://doi.org/10.1016/j.jasms.2009.04.003}}</ref> e 17<ref>{{Cita pubblicazione|nome=Carina|cognome=Proença|nome2=Marisa|cognome2=Freitas|nome3=Daniela|cognome3=Ribeiro|data=2017-01-01|titolo=α-Glucosidase inhibition by flavonoids: an in vitro and in silico structure–activity relationship study|rivista=Journal of Enzyme Inhibition and Medicinal Chemistry|volume=32|numero=1|pp=1216–1228|accesso=2022-03-01|doi=10.1080/14756366.2017.1368503|url=https://doi.org/10.1080/14756366.2017.1368503}}</ref> volte maggiore. Lo studio in questione descrive il legame con l'enzima come [[Inibizione enzimatica|reversibile]] e suggerisce un'affinità nel legare l'enzima libero o il complesso enzima-substrato ([[Inibitore non competitivo|inibizione non competitiva]])<ref name=":6" />.


Il processo di inattivazione segue una cinetica di primo ordine, essa si legherebbe in modo rapido e spontaneo (con ΔG° negativo), disattivando la funzione catalitica dell'enzima. Inoltre, la cinetica dell'interazione mostra che il processo raggiunge uno stato di equilibrio in brevissimo tempo, suggerendo siti di legame specifici per inibitori dell'α-glucosidasi <ref name=":6" />.
Il processo di inattivazione segue una cinetica di primo ordine, essa si legherebbe in modo rapido e spontaneo (con ΔG° negativo), disattivando la funzione catalitica dell'enzima. Inoltre, la cinetica dell'interazione mostra che il processo raggiunge uno stato di equilibrio in brevissimo tempo, suggerendo siti di legame specifici per inibitori dell'α-glucosidasi<ref name=":6" />.


Le prove di BSA ([[Fluorimetria|saggio fluorimetrico]]) indicano che la modalità di interazione predominante della luteolina con l'enzima è di ''static quenching mechanism'' (meccanismo di spegnimento della fluoriscenza statico), sicuramente in misura maggiore rispetto all'acarbosio. Inoltre viene evidenziato come l'affinità di legame diminuisce a temperature più elevate. Invece ΔS° e ΔH° negativi suggeriscono che [[Forza di van der Waals|Forze di Van der Waals]] e il [[Legame a idrogeno|legame H]] hanno guidato l'interazione con l'enzima <ref name=":6" />.
Le prove di BSA ([[Fluorimetria|saggio fluorimetrico]]) indicano che la modalità di interazione predominante della luteolina con l'enzima è di ''static quenching mechanism'' (meccanismo di spegnimento della fluoriscenza statico), sicuramente in misura maggiore rispetto all'acarbosio. Inoltre viene evidenziato come l'affinità di legame diminuisce a temperature più elevate. Invece ΔS° e ΔH° negativi suggeriscono che [[Forza di van der Waals|Forze di Van der Waals]] e il [[Legame a idrogeno|legame H]] hanno guidato l'interazione con l'enzima<ref name=":6" />.


=== Attività antitumorale ===
=== Attività antitumorale ===
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Può infatti condizionare l'attività dei seguenti enzimi cellulari:
Può infatti condizionare l'attività dei seguenti enzimi cellulari:


* [[Citocromo P450|Citocromo 1]] umanoː inibisce questo enzima, sopprimendo l'attività [[Mutagenesi sito specifica|mutagena]] dei pro-mutageni <ref name=":3">{{Cita pubblicazione|nome=Yong|cognome=Lin|nome2=Ranxin|cognome2=Shi|nome3=Xia|cognome3=Wang|data=2008-11-01|titolo=Luteolin, a Flavonoid with Potential for Cancer Prevention and Therapy|rivista=Current Cancer Drug Targets|volume=8|numero=7|pp=634–646|accesso=2022-02-18|doi=10.2174/156800908786241050|url=http://dx.doi.org/10.2174/156800908786241050}}</ref>;
* [[Citocromo P450|Citocromo 1]] umanoː inibisce questo enzima, sopprimendo l'attività [[Mutagenesi sito specifica|mutagena]] dei pro-mutageni<ref name=":3">{{Cita pubblicazione|nome=Yong|cognome=Lin|nome2=Ranxin|cognome2=Shi|nome3=Xia|cognome3=Wang|data=2008-11-01|titolo=Luteolin, a Flavonoid with Potential for Cancer Prevention and Therapy|rivista=Current Cancer Drug Targets|volume=8|numero=7|pp=634–646|accesso=2022-02-18|doi=10.2174/156800908786241050|url=http://dx.doi.org/10.2174/156800908786241050}}</ref>;
* Chinasi ciclina dipendenti ([[Chinasi ciclina dipendente|CDK]]) mediante l'up-regolazione degli inibitori delle chinasi, proteine che agiscono nei punti di controllo del ciclo cellulare, alterato nelle cellule tumorali <ref name=":3" />;
* Chinasi ciclina dipendenti ([[Chinasi ciclina dipendente|CDK]]) mediante l'up-regolazione degli inibitori delle chinasi, proteine che agiscono nei punti di controllo del ciclo cellulare, alterato nelle cellule tumorali<ref name=":3" />;
* [[Topoisomerasi]], enzima che ripara il DNA delle cellule tumorali <ref name=":3" />;
* [[Topoisomerasi]], enzima che ripara il DNA delle cellule tumorali<ref name=":3" />;
* Inibire la fosforilazione della [[Tirosina chinasi di Bruton|tirosina chinasi]] mediata da [[Fattore di crescita dell'epidermide|EGF]] (Epidermal growth factor) nel carcinoma epidermoide della pelle <ref>{{Cita pubblicazione|nome=Y -T|cognome=Huang|nome2=J -J|cognome2=Hwang|nome3=P -P|cognome3=Lee|data=1999-11|titolo=Effects of luteolin and quercetin, inhibitors of tyrosine kinase, on cell growth and metastasis-associated properties in A431 cells overexpressing epidermal growth factor receptor|rivista=British Journal of Pharmacology|volume=128|numero=5|pp=999–1010|accesso=2022-02-18|doi=10.1038/sj.bjp.0702879|url=http://dx.doi.org/10.1038/sj.bjp.0702879}}</ref>;
* Inibire la fosforilazione della [[Tirosina chinasi di Bruton|tirosina chinasi]] mediata da [[Fattore di crescita dell'epidermide|EGF]] (Epidermal growth factor) nel carcinoma epidermoide della pelle<ref>{{Cita pubblicazione|nome=Y -T|cognome=Huang|nome2=J -J|cognome2=Hwang|nome3=P -P|cognome3=Lee|data=1999-11|titolo=Effects of luteolin and quercetin, inhibitors of tyrosine kinase, on cell growth and metastasis-associated properties in A431 cells overexpressing epidermal growth factor receptor|rivista=British Journal of Pharmacology|volume=128|numero=5|pp=999–1010|accesso=2022-02-18|doi=10.1038/sj.bjp.0702879|url=http://dx.doi.org/10.1038/sj.bjp.0702879}}</ref>;
* Inibire la proliferazione indotta da [[Fattore di crescita derivato dalle piastrine|PDGF]] (Platelet-Derived Growth Factor) <ref>{{Cita pubblicazione|nome=Jin-Ho|cognome=Kim|nome2=Yong-Ri|cognome2=Jin|nome3=Beoung-Soo|cognome3=Park|data=2005-06-15|titolo=Luteolin prevents PDGF-BB-induced proliferation of vascular smooth muscle cells by inhibition of PDGF β-receptor phosphorylation|rivista=Biochemical Pharmacology|volume=69|numero=12|pp=1715–1721|lingua=en|accesso=2022-02-18|doi=10.1016/j.bcp.2005.04.002|url=https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S0006295205002236}}</ref>;
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* 15-lipossigenasi, coinvolta nelle reazioni infiammatorie (genesi di leucotrieni);
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* la [[Casein chinasi|caseina chinasi 1-gamma]], altra chinasi con effetti pleiotropici sulla trasduzione del segnale;
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* la [[chinasi Janus 2]] (JAK2), che interviene nei fenomeni immunitari mediati da molte citochine;
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La luteolina sarebbe anche in grado di indurre l’apoptosi in cellule tumorali, attivando delle vie di segnale specifiche e sopprimendo invece le vie che determinano la sopravvivenza di queste cellule, la loro metastasi e l'adesione negli altri tessuti <ref name=":4" />. Tra i meccanismi che permetterebbero alla luteolina di inibire la crescita tumorale si descrive la capacità anti-angiogenica, mediata dalla inibizione di MMP e COX-2 <ref name=":5">{{Cita pubblicazione|nome=Rashmi K|cognome=Ambasta|nome2=Rohan|cognome2=Gupta|nome3=Dhiraj|cognome3=Kumar|data=2019-07-22|titolo=Can luteolin be a therapeutic molecule for both colon cancer and diabetes?|rivista=Briefings in Functional Genomics|volume=18|numero=4|pp=230–239|lingua=en|accesso=2022-02-18|doi=10.1093/bfgp/ely036|url=https://academic.oup.com/bfg/article/18/4/230/5181441}}</ref>.
La luteolina sarebbe anche in grado di indurre l’apoptosi in cellule tumorali, attivando delle vie di segnale specifiche e sopprimendo invece le vie che determinano la sopravvivenza di queste cellule, la loro metastasi e l'adesione negli altri tessuti<ref name=":3" />. Tra i meccanismi che permetterebbero alla luteolina di inibire la crescita tumorale si descrive la capacità anti-angiogenica, mediata dalla inibizione di MMP e COX-2<ref name=":5">{{Cita pubblicazione|nome=Rashmi K|cognome=Ambasta|nome2=Rohan|cognome2=Gupta|nome3=Dhiraj|cognome3=Kumar|data=2019-07-22|titolo=Can luteolin be a therapeutic molecule for both colon cancer and diabetes?|rivista=Briefings in Functional Genomics|volume=18|numero=4|pp=230–239|lingua=en|accesso=2022-02-18|doi=10.1093/bfgp/ely036|url=https://academic.oup.com/bfg/article/18/4/230/5181441}}</ref>.


=== Attività antimicrobica ===
=== Attività antimicrobica ===
Alcuni studi presentano la luteolina anche come antimicrobico. In particolare è stata studiata la sua attività contro il virus [[Herpesvirus umano 4|Epstein-Barr]] e contro il virus dell’[[epatite B]], in quanto riduce la [[replicazione del DNA]] virale <ref name=":2" />.
Alcuni studi presentano la luteolina anche come antimicrobico. In particolare è stata studiata la sua attività contro il virus [[Herpesvirus umano 4|Epstein-Barr]] e contro il virus dell’[[epatite B]], in quanto riduce la [[replicazione del DNA]] virale<ref name=":2" />.


Un altro studio suggerisce la sua attività antifunginea in topi con infezione acuta di [[Chlamydophila pneumoniae|Chlamydia pneumoniae]], si è visto come riduce l’infiammazione e lo sviluppo di anticorpi specifici <ref>{{Cita pubblicazione|nome=Liisa|cognome=Törmäkangas|nome2=Pia|cognome2=Vuorela|nome3=Elise|cognome3=Saario|data=2005-10-15|titolo=In vivo treatment of acute Chlamydia pneumoniae infection with the flavonoids quercetin and luteolin and an alkyl gallate, octyl gallate, in a mouse model|rivista=Biochemical Pharmacology|volume=70|numero=8|pp=1222–1230|lingua=en|accesso=2022-02-18|doi=10.1016/j.bcp.2005.07.012|url=https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S000629520500482X}}</ref>.
Un altro studio suggerisce la sua attività antifunginea in topi con infezione acuta di [[Chlamydophila pneumoniae|Chlamydia pneumoniae]], si è visto come riduce l’infiammazione e lo sviluppo di anticorpi specifici<ref>{{Cita pubblicazione|nome=Liisa|cognome=Törmäkangas|nome2=Pia|cognome2=Vuorela|nome3=Elise|cognome3=Saario|data=2005-10-15|titolo=In vivo treatment of acute Chlamydia pneumoniae infection with the flavonoids quercetin and luteolin and an alkyl gallate, octyl gallate, in a mouse model|rivista=Biochemical Pharmacology|volume=70|numero=8|pp=1222–1230|lingua=en|accesso=2022-02-18|doi=10.1016/j.bcp.2005.07.012|url=https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S000629520500482X}}</ref>.


Si è visto come ha sortito effetti anche sulle infezioni di alcuni parassiti quali [[Leishmania|Leishmania donovani]] e [[Plasmodium falciparum]] <ref name=":2" />.
Si è visto come ha sortito effetti anche sulle infezioni di alcuni parassiti quali [[Leishmania|Leishmania donovani]] e [[Plasmodium falciparum]]<ref name=":2" />.


== Note ==
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* Fang J et al: Luteolin inhibits insulin-like growth factor 1 receptor signaling in prostate cancer cells. Carcinogenesis. 2007 Mar;28(3):713-23.
* Fang J et al: Luteolin inhibits insulin-like growth factor 1 receptor signaling in prostate cancer cells. Carcinogenesis. 2007 Mar;28(3):713-23.
* Byun S et al: Luteolin inhibits protein kinase C(epsilon) and c-Src activities and UVB-induced skin cancer. Cancer Res. 2010 Mar 15;70(6):2415-23.
* Byun S et al: Luteolin inhibits protein kinase C(epsilon) and c-Src activities and UVB-induced skin cancer. Cancer Res. 2010 Mar 15;70(6):2415-23.
*210.     Franza L, Carusi V, Nucera E, Pandolfi F. Luteolin, inflammation and cancer: Special emphasis on gut microbiota. Biofactors 2021. DOI: 10.1002/biof.1710. <br />211  Conti P. Caraffa A . Gallenga CE, Rhiannon R, Kritas SK, Frydas I.  Alì Y ,Di Emidio P Ronconi G Pandolfi F. Powerful anti-inflammatory action of luteolin: Potential increase with IL-38  ''BioFactors''. 2021; 1– 5. <nowiki>https://doi.org/10.1002/biof.1718</nowiki> IF= 4.734
*210. Franza L, Carusi V, Nucera E, Pandolfi F. Luteolin, inflammation and cancer: Special emphasis on gut microbiota. Biofactors 2021. DOI: 10.1002/biof.1710. <br />211 Conti P. Caraffa A . Gallenga CE, Rhiannon R, Kritas SK, Frydas I. Alì Y ,Di Emidio P Ronconi G Pandolfi F. Powerful anti-inflammatory action of luteolin: Potential increase with IL-38 ''BioFactors''. 2021; 1– 5. <nowiki>https://doi.org/10.1002/biof.1718</nowiki> IF= 4.734
* Parker-Athill E et al: Flavonoids, a prenatal prophylaxis via targeting JAK2/STAT3 signaling to oppose IL-6/MIA associated autism. J Neuroimmunol. 2009 Dec 10; 217(1-2):20-27.
* Parker-Athill E et al: Flavonoids, a prenatal prophylaxis via targeting JAK2/STAT3 signaling to oppose IL-6/MIA associated autism. J Neuroimmunol. 2009 Dec 10; 217(1-2):20-27.
* Francine Medjiofack Djeujo, Eugenio Ragazzi, Miriana Urettini, Beatrice Sauro, Magnolol and Luteolin Inhibition of α-Glucosidase Activity: Kinetics and Type of Interaction Detected by In Vitro and In Silico Studies, in Pharmaceuticals, vol. 15, n. 2, 8 febbraio 2022, pp. 205, DOI:10.3390/ph15020205


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Luteolina
Nome IUPAC
2-(3,4-diidrossifenil)-5,7-diidrossi-4-cromenone
Caratteristiche generali
Formula bruta o molecolareC15H10O6
Massa molecolare (u)286,24
Numero CAS491-70-3
Numero EINECS207-741-0
PubChem5280445
DrugBankDBDB15584
SMILES
C1=CC(=C(C=C1C2=CC(=O)C3=C(C=C(C=C3O2)O)O)O)O
Indicazioni di sicurezza
Simboli di rischio chimico
irritante
attenzione
Frasi H315 - 319 - 335
Consigli P261 - 305+351+338 [1]
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La luteolina fa parte dei composti polifenolici ed è un flavone. Si trova in moltissime piante ed è da tempo nota la sua capacità antiossidante.[2]

È un composto cristallino di color bianco sporco, quasi giallo. Il suo nome, infatti, deriva dall'aggettivo latino "luteus", che significa di "color giallo biondo".

Chimica

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Appartiene alla classe dei flavoni, come tale è il flavone tetraidrossilato nelle posizioni 4', 5', 5 e 7[3]. La struttura dei flavonoidi è fondamentale per la loro attività antiossidante, soprattutto per adiuvare la delocalizzazione e l'acquisizione degli elettroni[4].

Un altro fondamentale parametro da considerare per la capacità antiossidante della luteolina è la lipofilia della molecola, misurata tramite il coefficiente di ripartizione olio-acqua. Essa, nelle piante, è legata a molecole zuccherine tramite i gruppi idrossilici[4], ma in assorbimento intestinale vengono liberati i legami, e questo permette l'assorbimento della molecola all'interno delle membrane cellulari[5].

Biosintesi

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La biosintesi della luteolina deriva dall'unione del 4-cumaroil-CoA e il 3-malonil-CoA tramite l'enzima calcone sintasi. Il 4-cumaroil-CoA deriva dalla via dell'acido shikimico. Il 3-malonil-CoA deriva dall'Acetil-CoA. A quel punto intervengono le idrossilasi che si occupano della reazione di idrossilazione nelle posizioni indicate per la luteolina[6].

Derivati

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La luteolina è presente nelle piante sia come aglicone che come glicoside. Tra i più comuni derivati troviamoː

Troviamo anche poi i glicosidi e gli zuccheri maggiormente legati sonoː xilosio, ramnosio, rutinosio, arabinosio, acido glucuronico.[2]

Distribuzione nelle piante

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Isolata originariamente dalle foglie di timo, tarassaco e salvia, successivamente venne ritrovata in moltissime pianteː Briofite, Pteridofite, Pinofite, Magnolifite.

Tra le più comuni dicotiledoni ricordiamoː

Nelle monocotiledoni invece la luteolina è stata identificata nelleː

La luteolina è stata identificata in molte piante alimentari come carote, peperoni, sedano, olio d'oliva, menta piperita, timo, rosmarino, origano, lattuga, foglie di Perilla, melograno, cioccolato, rooibos tè, germogli di grano saraceno, rapa, capperi e cetrioli. È stata anche identificata nel limone, barbabietola, cavoletti di Bruxelles, cavolo, cavolfiore, erba cipollina, finocchio, prezzemolo, spinaci e tè verde.[2]

Attività biologiche

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È ampiamente studiata perché è risultata dotata di interessanti proprietà biologiche, tra le quali ci sono principalmente l'attività antiossidante, di inibizione del picco glicemico post-prandiale, recenti studi riguardano il campo oncologico e il campo microbiologico.

Attività antiossidante

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È stata studiata la capacità di eliminare le specie reattive dell’ossigeno (ROS) e dell’azoto (RNS) ma anche di chelare i metalli di transizione che possono indurre danni ossidativi, così come inibire gli enzimi pro-ossidanti e indurre gli enzimi antiossidanti[2].

Uno studio condotto sulle cellule CH27 di carcinoma polmonare squamoso umano mostra che l'effetto farmacologico di questo flavonoide è associato all'attivazione della superossido dismutasi e della catalasi anziché alla produzione di specie reattive dell'ossigeno e alla distruzione del potenziale della membrana mitocondriale[7].

Un altro meccanismo antiossidante messo in atto dalla luteolina sarebbe legato alla modulazione dei lipopolisaccaridi[5].

A concentrazioni micromolari può inibire il fattore NF-κB, la cui attivazione porta all’aumento del rilascio di citochine pro-infiammatorie, chemochine ed enzimi (quali iNOS, COX-2, TNF, IL-6, IL-8, IL-1). È stato anche identificato come la luteolina inibisce il rilascio di TNF-α nei macrofagi. Inoltre la molecola è anche in grado di bloccare l’attivazione di NF-κB indotta dal lipopolisaccaride (LPS). La luteolina inoltre inibisce l’attivazione della proteina AP-1, che media l’espressione della citochina IL-6. L’attività inibitoria della luteolina è indirizzata anche verso gli enzimi pro-infiammatori, come le cicloossigenasi, atte a sintetizzare prostaglandine e leucotrieni, noti mediatori dell’infiammazione[2][5].

Attività anti-diabetica

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Sembrerebbe avere un effetto protettivo sulla cardiomiopatia diabetica, la nefropatia diabetica e lo stress ossidativo nella condizione diabetica, ciò tramite l’azione di scavenging dei ROS e l’aumento dell’espressione della SOD, attività quindi legata alla sua capacità antiossidante[8].

Inibizione α-glucosidasiː reversibile e non competitiva

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Uno studio interessante del 2022 mette in relazione la luteolina con l'acarbosio (uno dei composti utilizzati nella terapia antidiabetica al giorno d'oggi) per quanto riguarda l'attività inibitoria sull'α-glucosidasi. La luteolina presenta una marcata inibizione dell'enzima responsabile del picco glicemico, in modo dipendente dalla concentrazione con valore di IC50 32,3 µM, quindi 25 volte inferiori a quelle dell'acarbosio[9]. Anche altri studi evidenziano la potenza inibitoria della luteolina, che, in relazione all'acarbosio, risulta 13[10] e 17[11] volte maggiore. Lo studio in questione descrive il legame con l'enzima come reversibile e suggerisce un'affinità nel legare l'enzima libero o il complesso enzima-substrato (inibizione non competitiva)[9].

Il processo di inattivazione segue una cinetica di primo ordine, essa si legherebbe in modo rapido e spontaneo (con ΔG° negativo), disattivando la funzione catalitica dell'enzima. Inoltre, la cinetica dell'interazione mostra che il processo raggiunge uno stato di equilibrio in brevissimo tempo, suggerendo siti di legame specifici per inibitori dell'α-glucosidasi[9].

Le prove di BSA (saggio fluorimetrico) indicano che la modalità di interazione predominante della luteolina con l'enzima è di static quenching mechanism (meccanismo di spegnimento della fluoriscenza statico), sicuramente in misura maggiore rispetto all'acarbosio. Inoltre viene evidenziato come l'affinità di legame diminuisce a temperature più elevate. Invece ΔS° e ΔH° negativi suggeriscono che Forze di Van der Waals e il legame H hanno guidato l'interazione con l'enzima[9].

Attività antitumorale

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Recenti studi dimostrano alcuni possibili effetti della luteolina su vari tipi di tumori sperimentali.

Può infatti condizionare l'attività dei seguenti enzimi cellulari:

  • Citocromo 1 umanoː inibisce questo enzima, sopprimendo l'attività mutagena dei pro-mutageni[12];
  • Chinasi ciclina dipendenti (CDK) mediante l'up-regolazione degli inibitori delle chinasi, proteine che agiscono nei punti di controllo del ciclo cellulare, alterato nelle cellule tumorali[12];
  • Topoisomerasi, enzima che ripara il DNA delle cellule tumorali[12];
  • Inibire la fosforilazione della tirosina chinasi mediata da EGF (Epidermal growth factor) nel carcinoma epidermoide della pelle[13];
  • Inibire la proliferazione indotta da PDGF (Platelet-Derived Growth Factor)[14];
  • Inibizione del recettore del fattore di crescita simile all’insulina (IGFr) nelle cellule del cancro alla prostata[15];
  • Inibizione della proliferazione mediata dai recettori degli estrogeni ER, avrebbe quindi attività anti-estrogenica[12];
  • 15-lipossigenasi, coinvolta nelle reazioni infiammatorie (genesi di leucotrieni);
  • 5'-nucleotidasi, che scinde l'AMP in fosfato ed adenosina, mediatore di multipli effetti biochimici;
  • la fosfatidilinositolo-3-chinasi (PI-3K), che regola il metabolismo glucidico governato dell'insulina, nonché certe funzioni cellulari legate all'oncogenesi;
  • la caseina chinasi 1-gamma, altra chinasi con effetti pleiotropici sulla trasduzione del segnale;
  • la chinasi Janus 2 (JAK2), che interviene nei fenomeni immunitari mediati da molte citochine;

La luteolina sarebbe anche in grado di indurre l’apoptosi in cellule tumorali, attivando delle vie di segnale specifiche e sopprimendo invece le vie che determinano la sopravvivenza di queste cellule, la loro metastasi e l'adesione negli altri tessuti[12]. Tra i meccanismi che permetterebbero alla luteolina di inibire la crescita tumorale si descrive la capacità anti-angiogenica, mediata dalla inibizione di MMP e COX-2[8].

Attività antimicrobica

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Alcuni studi presentano la luteolina anche come antimicrobico. In particolare è stata studiata la sua attività contro il virus Epstein-Barr e contro il virus dell’epatite B, in quanto riduce la replicazione del DNA virale[5].

Un altro studio suggerisce la sua attività antifunginea in topi con infezione acuta di Chlamydia pneumoniae, si è visto come riduce l’infiammazione e lo sviluppo di anticorpi specifici[16].

Si è visto come ha sortito effetti anche sulle infezioni di alcuni parassiti quali Leishmania donovani e Plasmodium falciparum[5].

Note

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  1. ^ Sigma Aldrich; rev. del 19.02.2013
  2. ^ a b c d e Miguel Lopez-Lazaro, Distribution and Biological Activities of the Flavonoid Luteolin, in Mini-Reviews in Medicinal Chemistry, vol. 9, n. 1, 1º gennaio 2009, pp. 31–59, DOI:10.2174/138955709787001712. URL consultato il 18 febbraio 2022.
  3. ^ (EN) Muhammad Imran, Abdur Rauf e Tareq Abu-Izneid, Luteolin, a flavonoid, as an anticancer agent: A review, in Biomedicine & Pharmacotherapy, vol. 112, 1º aprile 2019, pp. 108612, DOI:10.1016/j.biopha.2019.108612. URL consultato il 18 febbraio 2022.
  4. ^ a b Kelly L. Wolfe e Rui Hai Liu, Structure−Activity Relationships of Flavonoids in the Cellular Antioxidant Activity Assay, in Journal of Agricultural and Food Chemistry, vol. 56, n. 18, 24 settembre 2008, pp. 8404–8411, DOI:10.1021/jf8013074. URL consultato il 18 febbraio 2022.
  5. ^ a b c d e (EN) Muhammad Faisal Manzoor, Nazir Ahmad e Zahoor Ahmed, Novel extraction techniques and pharmaceutical activities of luteolin and its derivatives, in Journal of Food Biochemistry, vol. 43, n. 9, 2019, pp. e12974, DOI:10.1111/jfbc.12974. URL consultato il 18 febbraio 2022.
  6. ^ (EN) Maike Petersen, Rosmarinic acid: new aspects, in Phytochemistry Reviews, vol. 12, n. 1, 1º marzo 2013, pp. 207–227, DOI:10.1007/s11101-013-9282-8. URL consultato il 18 febbraio 2022.
  7. ^ (EN) Henry Wing-Cheung Leung, Chao-Lin Kuo e Wen-Hui Yang, Antioxidant enzymes activity involvement in luteolin-induced human lung squamous carcinoma CH27 cell apoptosis, in European Journal of Pharmacology, vol. 534, n. 1, 18 marzo 2006, pp. 12–18, DOI:10.1016/j.ejphar.2006.01.021. URL consultato il 18 febbraio 2022.
  8. ^ a b (EN) Rashmi K Ambasta, Rohan Gupta e Dhiraj Kumar, Can luteolin be a therapeutic molecule for both colon cancer and diabetes?, in Briefings in Functional Genomics, vol. 18, n. 4, 22 luglio 2019, pp. 230–239, DOI:10.1093/bfgp/ely036. URL consultato il 18 febbraio 2022.
  9. ^ a b c d Francine Medjiofack Djeujo, Eugenio Ragazzi e Miriana Urettini, Magnolol and Luteolin Inhibition of α-Glucosidase Activity: Kinetics and Type of Interaction Detected by In Vitro and In Silico Studies, in Pharmaceuticals, vol. 15, n. 2, 8 febbraio 2022, pp. 205, DOI:10.3390/ph15020205. URL consultato il 1º marzo 2022.
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  11. ^ Carina Proença, Marisa Freitas e Daniela Ribeiro, α-Glucosidase inhibition by flavonoids: an in vitro and in silico structure–activity relationship study, in Journal of Enzyme Inhibition and Medicinal Chemistry, vol. 32, n. 1, 1º gennaio 2017, pp. 1216–1228, DOI:10.1080/14756366.2017.1368503. URL consultato il 1º marzo 2022.
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